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    如此“肾”好,你知多少?集萃南宫28ng糖尿病肾病模型助您研究一臂之力

    2024-04-10

    糖尿病肾病(diabetic nephropathy,DN)是糖尿病患者最常见的慢性并发症之一(影响20~50%的糖尿病患者),其病理特征包括肾小球基底膜增厚、系膜基质扩张,以及后期的肾小球结节性硬化和退化,肾小管萎缩、间质纤维化,进而出现肾脏结构和功能异常,最终形成终末期肾病[1]。糖尿病肾病的发生机制复杂,长期高血糖以及系统性高血压是两个关键的促进DN病程发展的因素。虽然目前已有针对糖肾的治疗药物,如SGLT2抑制剂、RAS系统阻断剂,但由于糖肾患者基数较大,仍需要开发新的治疗方法满足临床患者多样化的需求。


    糖尿病肾病机制研究和药物开发离不开临床前动物模型的应用,建立适当的动物模型,可以为研究DN的病因、发病机制和病理生理改变提供重要的支撑,同时也为临床治疗DN提供理论依据。根据造模原理的不同,糖尿病肾病动物模型可分为诱导模型、自发突变模型和转基因模型3大类。单纯的诱导模型通常构建周期较长,且大多只能模拟早期的人类DN病变。即使采用联合造模方式,如用STZ诱导自发型/转基因型小鼠或在转基因模型上进行单侧肾脏切除等,也仍然很难完全复刻临床中晚期糖肾病人的肾脏病理变化特点(如肾小球结节性硬化)。


    然而,将db/db小鼠的eNOS基因敲除形成的eNOS-/-db/db模型,在出现2型糖尿病、肥胖、高血压表型的同时,也会表现出明显的肾脏病理如系膜基质扩张、系膜溶解、基底膜增厚、小动脉玻璃样变性以及肾小管间质纤维化等特征[2]。因此,eNOS-/-db/db是目前较好的能够模拟人类晚期DN结构和功能改变的动物模型[3]


    糖尿病肾病研究小鼠模型[4]

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    eNOS(NOS3)是一氧化氮(nitric oxide,NO)合成的限速酶,其功能异常或缺失会使NO调节脉管系统通透性的功能减弱,从而引起血管内皮细胞损伤。而内皮损伤是糖尿病及DN血管病变的重要机制和病理特征[5]。基于此,集萃南宫28ng利用基因编辑技术在C57BLKS背景上构建了eNos基因突变小鼠(BKS-eNos KO),并与BKS-db(经典的Ⅱ型糖尿病小鼠)杂交获得了BKS-db-eNos KO小鼠。通过表型分析发现BKS-db-eNos KO小鼠不但保持了BKS-db小鼠的肥胖和严重糖尿病特征,还表现出系统性高血压、更严重的蛋白尿以及肾脏组织病变,可以模拟临床中重度糖尿病肾病患者的症状。


    BKS-db-eNos KO小鼠表型特征


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    从肾小管蛋白管型、肾小管嗜碱性粒细胞病变、间质炎症、间质纤维化和肾小球病变等维度对BKS-db-eNos KO进行病理评分。结果显示在6周龄时,BKS-db-eNos KO病变并不明显,8周龄有比较明显的提高,随周龄增大进一步发展,基本到16周龄各个维度评分达到峰值。


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    16周龄BKS-db-eNos KO小鼠肾脏PAS染色结果。星号指示肾小管嗜碱性粒细胞增多;黑色虚线箭头指示间质炎症;白色实心箭头指示毛细血管扩张,出现微动脉瘤;黑色实心箭头指示系膜基质扩张;黄色实心箭头指示肾小球结节性病变;红色实心箭头指示弥漫性肾小球硬化;绿色实心箭头指示肾小球退化。(出现相应组织学变化的小鼠数量)/(该组中的小鼠总数)。


    基于BKS-db-eNos KO小鼠的药效测试

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    使用SGTL2抑制剂(Empagliflozin,恩格列净)和ACE抑制剂(Lisinopril,赖诺普利)对BKS-db-eNos KO进行8周的给药治疗。结果显示Lisinopril能够显示改善模型小鼠的肾损伤指标UACR和生存率。当前肾脏病理分析正在进行中,敬请关注。


    BKS-db-eNos KO小鼠疾病进展概览

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    注:可根据BKS-db-eNos KO小鼠疾病进展和具体研究目的,选择合适周龄的小鼠用于实验,合理安排实验设计。


    集萃南宫28ngBKS-db-eNOS KO(品系编号:T053852)品系火热销售中。除该模型外,集萃南宫28ng也可提供手术诱导(如单肾切除)和药物诱导(如STZ、L-NAME)的糖肾模型和服务。欢迎咨询了解!


    参考文献

    [1]Selby, N. M. & Taal, M. W. An updated overview of diabetic nephropathy: Diagnosis, prognosis, treatment goals and latest guidelines. Diabetes Obes Metab. 2020 Apr:22 Suppl 1:3-15.

    [2]Mohan S, Reddick RL, Musi N, et al. Diabetic eNOS knockout mice develop distinct macro- and microvascular complications. Lab Invest, 2008, 88(5):515-528.

    [3]Brosius FC 3rd, Alpers CE, Bottinger EP, et al. Mouse models of diabetic nephropathy. J Am Soc Nephrol, 2009, 20(12) : 2503-2512

    [4]Kengo Azushima, Susan B Gurley, Thomas M Coffman. Modelling diabetic nephropathy in mice. Nat Rev Nephrol. 2018 Jan;14(1):48-56.

    [5]Nakagawa T, Tanabe K, Croker B P, et al. Endothelial dysfunction as a potential contributor in diabetic nephropathy. Nat Rev Nephrol, 2011, 7(1) : 36-44.

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